Documento de la Junta de Castilla y León sobre Ut 10 Parasitología. El Pdf, de nivel universitario y materia Biología, aborda las generalidades del parasitismo, vías de transmisión, acción patógena, clínica, profilaxis y terminología, así como el diagnóstico y tratamiento de parasitosis como equinococosis y filariasis.
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El parasitismo se define como una relación en la que un organismo (el parásito) se nutre a expensas del huésped.
Algunas características de esta relación huésped-parásito son las siguientes:
Todos los parásitos estudiados en este tema son células eucariotas, generalmente pertenecen a dos reinos: los protistas, donde encontramos los protozoos y en el reino animal, los helmintos.
Los parásitos se pueden clasificar según diferentes puntos de vista:
Punto de vista temporal: Se habla de un parasitismo ocasional donde encontramos sobre todo parásitos con ciclo de vida libre y se habla de parasitismo permanente u obligado cuando prácticamente no hay ciclos de vida libre y necesitan parasitar bien vectores ó huésped.
Punto de vista de la situación: Se habla de endoparasitismo cuando el parásito se sitúa en el interior del huésped, y se habla de ectoparasitismo si el parásito se sitúa en la piel ó zona cercana. Aunque sean términos discutidos se denomina infección al endoparasitismo e infestación en el caso de ectoparasitismo.
Punto de vista del huésped: Se habla de huésped monoxeno cuando todas las fases del parásito transcurren en el huésped, también se la puede denominar definitivo ó único. Huésped no único, es decir, existen varios huéspedes que se denominan intermediarios (estadios asexuales) y un huésped definitivo, en el que se desarrollan las fases sexuales.
Dependen de cada ciclo de vida del parásito y por ello son muy variables
Está basada en los siguientes mecanismos:
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Se caracteriza por ser muy variable, desde el estado de portadores asintomáticos, portadores con síntomas leves, y por último manifestaciones graves, hasta la muerte.
La clínica depende del tamaño, el número, acción y toxicidad del parásito, pero también depende de la respuesta inmunitaria del huésped.
Existen una serie de signos y síntomas característicos como la anorexia con la consiguiente pérdida de peso, dolor abdominal, cefaleas frecuentes. Muchas veces estos signos no hacen pensar que el paciente pueda cursar una parasitosis por lo que el diagnóstico del laboratorio es muy importante.
Es muy compleja y multidisciplinaria, se puede resumir en los siguientes puntos:
Ante cualquier investigación parasitológica debe realizarse, en primer lugar, un interrogatorio al paciente en el que nos informaremos de las siguientes cuestiones: hábitos higiénicos, si posee animales domésticos en casa, si está tomando medicamentos, historia clínica actual, si ha residido en otros países, historia de viajes recientes ...
Las muestras dependen del tipo de parásitos que tratemos de estudiar, así podremos tomar las siguientes muestras: heces, sangre, orina, exudado vaginal, LCR, líquidos de punción, exudado cutáneo, expectoraciones ...
El diagnóstico en gran parte se basa en la detección de huevos, larvas o adultos de helmintos y de trofozoítos o quistes de los protozoos.
Por tanto, la identificación se basa en la morfología; además de las técnicas que se van a describir a continuación, existen una serie de pruebas complementarias que pueden ayudar como:
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Los pasos son observación macroscopica de la muestra, concentración, y observación microscópica.
(suele ser la muestra de elección)
Es la muestra más frecuente. Como la expulsión de parásitos es intermitente se recomienda enviar 3 muestras al laboratorio, recogida cada una con un intervalo de 2-3 días. El procesamiento debe ser rápido sobretodo si se buscan trofozoítos, pues mueren pronto (tiempo menor a 30 minutos). En caso de no poder procesarlas de inmediato, se dispone a conservarlas utilizando métodos de conservación específicos.
El primer paso que se realiza es el EXAMEN MACROSCÓPICO: se anota la consistencia de las heces (blandas, duras, líquidas, semilíquidas, en bolitas (o caprinas), formes, semiformes ... ) y color (negras con contenido en sangre, verdes por consumo de vegetales medicamentos o biliverdina, ocres con elevado contenido en estercobilinógeno, poco coloreadas por presencia de leucostercobilina ... ) y se buscan parásitos enteros, huevos de helmintos y quistes de protozoos.
A continuación, se realiza uno de los MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN: Se utilizan para concentrar la muestra, puesto que el número de parásitos enteros, partes, larvas, huevos ... puede ser muy poco significativo. Existen diferentes métodos, pero la técnica que se recomienda es el método de sedimentación. También está el método de flotación, Método trifásico o de Bailenger, Técnica indirecta o de enriquecimiento
El tercer paso es el EXAMEN MICROSCÓPICO y puede hacerse de 2 formas:
Directo: Observación directa entre porta y cubre de una gota de suspensión de heces con una gota de lugol. La observación comenzará con los objetivos de menor aumento y se debe recorrer la preparación completa.
Técnicas de tinción: empleando técnicas de tinción permanentes, muy útiles sobre todo para diferenciar protozoos intestinales. Los métodos más utilizados son tricrómico o hierro-hematoxilina.
TÉCNICAS ESPECIALES: específicas de una serie de parásitos:
Prueba de Graham: para diagnosticar oxiuros. Consiste en pasar una cinta de celofán por la región perianal a última hora de la noche (coincide con la bajada de la hembra a la zona perianal a poner huevos) sin haber lavado la zona previamente. Pegar la cinta en un porta y observar al microscopio en busca de huevos.
Prueba de Criptosporidium: se detectan los quistes mediante tinciones ácido- alcohol resistentes modificadas.
SANGRE: es la muestra utilizada para diagnosticar el paludismo, las filarias, babesias y los tripanosomas. Se realiza por tinción permanente, la más utilizada es Giemsa, y se hace sobre una extensión en capa fina.
ESPUTO: En esta muestra puede observarse la fase larvaria de Ascaris, los ancilostomas, o los huevos de Paragonimus westermani. Las muestras de esputo se deben fluidificar a continuación se centrífuga, preparando extensiones con el sedimento. Se fijan químicamente y se realiza tinción de azul de toluidina.
EXUDADOS VAGINALES Y ORINA: Trichomonas vaginalis se suele detectar en fresco a partir de exudados vaginales. Si es a partir de orina, se centrifuga ésta en su totalidad y partir del sedimento puede realizarse examen en fresco o tras tinción por el método Giemsa o tinción de naranja de acridina.
BIOPSIAS DE HÍGADO, MÉDULA ÓSEA, LCR Y OJO: Leismanias, tripanosomas y amebas se pueden detectar mediante tinciones permanentes.