Documento de Universidad sobre enzimas, su definición, estructura, función y clasificación. El Pdf detalla los cofactores, la regulación de la actividad enzimática y la especificidad del sustrato, incluyendo técnicas de determinación en laboratorio clínico. Este material de Biología está organizado de forma clara y esquemática para facilitar el aprendizaje.
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T4. Apuntes sobre enzimas Introducción: Conceptos fundamentales
Las enzimas están formadas por cadenas polipeptídicas que adoptan estructuras tridimensionales específicas (estructura terciaria o cuaternaria).
Su actividad depende de la conservación de su estructura, la cual puede desnaturalizarse por cambios extremos en pH, temperatura o agentes químicos.
Centro activo: Región específica donde el sustrato se une y se lleva a cabo la reacción catalítica. Contiene residuos de aminoácidos esenciales para la unión al sustrato y para la catálisis.
Centro alostérico: Región (distinta del centro activo) donde se unen moléculas reguladoras llamadas moduladores alostéricos. La unión de los moduladores puede aumentar (activadores) o disminuir (inhibidores) la actividad enzimática.
Dominio catalítico: Responsable de la reacción química.
Dominio de union al sustrato: Interactúa específicamente con el sustrato, lo que determina la especificidad enzimática.
Moléculas no proteicas necesarias para la actividad enzimática.
Pueden ser: lones metálicos: (Ej. Fe2+, Mg2+, Zn2+) estabilizan la estructura del enzima o participan directamente en la reacción. Coenzimas: Moléculas orgánicas pequeñas, como NAD+, FAD o coenzima A, que actúan como transportadores de grupos químicos.
Se unen al centro alostérico, alterando la conformación de la enzima, pueden ser activadores o inhibidores. Ejemplo: La fosfofructoquinasa, regulada por ATP (inhibidor) y AMP (activador).
Tipos de inhibidores: Reversibles: Unión no permanente a la enzima, lo que permite la recuperación de su actividad. Competitiva: El inhibidor compite con el sustrato por el centro activo (puede superarse con más sustrato). No competitiva: El inhibidor se une a otro sitio de la enzima, reduciendo la actividad sin afectar la unión del sustrato. Acompetitiva: El inhibidor se une solo al complejo enzima-sustrato, bloqueando el progreso de la reacción. Irreversibles: El inhibidor forma un enlace covalente con la enzima, desactivandolo permanentemente.
Modificaciones covalentes: Como fosforilación o acetilación, que alteran la actividad enzimática.
Control génico: Regulación a nivel de expresión de la enzima.
Isoenzimas: enzimas con la misma función pero específicos de tejido
Forma del centro activo: Se ajusta al sustrato (como una "llave en una cerradura" o mediante un "ajuste inducido.")
Enlaces químicos: La unión al sustrato depende de interacciones específicas (puentes de hidrógeno, enlaces iónicos, interacciones hidrofóbicas). Ejemplo: La ureasa cataliza exclusivamente la hidrólisis de la urea.
Su actividad refleja la función de tejidos específicos.
Lactato deshidrogenasa (LDH): LDH-1 (corazón y eritrocitos). LDH-5 (hígado y músculo esquelético).
Creatina quinasa (CK): CK-MM (músculo esquelético). · CK-MB (músculo cardíaco). = CK-BB (cerebro).
Desarrollo a) Enzimas. Clasificación según su función y localización
1. Oxidorreductasas: Catalizan reacciones redox (transferencia de electrones o hidrógenos). · Ejemplo: Lactato deshidrogenasa (LDH).
2. Transferasas: Catalizan reacciones de transferencia de grupos funcionales entre moléculas. Ejemplo: Alanina aminotransferasa (ALT), aspartato aminotransferasa (AST)
3. Hidrolasas: Catalizan reacciones de hidrólisis: la ruptura de enlaces mediante agua. · Ejemplo: Amilasa, fosfatasa ácida
4. Liasas: Catalizan reacciones en las que se elimina un grupo funcional del compuesto con formación de un doble enlace, no participa el agua ni reacciones redox. Ejemplo: Aldolasa, desaminasas
5. Isomerasas: Catalizan la reorganización de isómeros dentro de una molécula (y por tanto, cambios en la geometría de las moléculas) Ejemplo: Fosfoglucoisomerasa.
6. Ligasas (o sintetasas): Forman enlaces uniendo dos moléculas utilizando energía de ATP. · Ejemplo: DNA ligasa, piruvato carboxilasa
Enzimas intracelulares: Localizadas dentro de las células, participan en procesos metabólicos específicos. · Ejemplo: Creatina quinasa (CK).
Enzimas extracelulares: Actúan fuera de las células, como en el plasma o el tracto digestivo. Ejemplo: Amilasa y lipasa.
Enzimas de membrana: Están ancladas en la membrana celular y participan en transporte o señalización. Ejemplo: Adenilato ciclasa.
b) Determinación de la actividad enzimática La actividad enzimática se mide como la velocidad de la reacción que cataliza, lo que depende de:
c) Técnicas para determinar enzimas en el laboratorio clínico La determinación de enzimas en el laboratorio clínico permite evaluar su actividad, concentración o presencia específica en distintas muestras biológicas. Los enfoques incluyen métodos cinéticos, inmunológicos y electroquímicos. Técnicas Principales:
Fundamento: La actividad enzimática se mide en función del cambio en la absorbancia provocado por la conversión del sustrato en producto. Este cambio puede deberse a la aparición o desaparición de compuestos absorbentes a una determinada longitud de onda
Ejemplos: ALT (alanina aminotransferasa): Se mide la formación de piruvato, que reacciona con 2,4-dinitrofenilhidrazina. · LDH (lactato deshidrogenasa): Basado en la oxidación/reducción del NADH, con cambio de absorbancia a 340 nm.
Ventajas: Alta precisión y reproducibilidad. Posibilidad de realizar medidas continuas para evaluar la cinética enzimática.
Fundamento: Detección de cambios en potencial eléctrico o corriente, generados por reacciones catalizadas por enzimas.
Ejemplo: Glucosa oxidasa para cuantificar glucosa.
Aplicación: Sensores específicos, como biosensores para metabolitos.
Fundamento: Uso de anticuerpos específicos para detectar enzimas o sus isoformas.
Ejemplo: Detección de troponinas cardíacas con actividad enzimática.
Ventajas: Alta especificidad. Ideal para isoenzimas o enzimas de baja concentración.
Fundamento: Reacciones enzimáticas que generan productos coloreados medibles a longitudes de onda específicas.
Ejemplo: Determinación de fosfatasa alcalina con sustratos cromogénicos.
Muestras Utilizadas:
Factores a Considerar:
Hemolisis: Puede liberar enzimas intracelulares como LDH y CK.
Lípidos o turbidez: Interfieren con mediciones espectrofotométricas.
Tiempo de procesamiento: Las enzimas son lábiles; se recomienda procesar rápidamente.
d) Verificación de Calibración de Equipos
e) Enzimas determinadas habitualmente en el laboratorio Determinaciones habituales
ALT y AST: Marcadores de daño hepatocelular.
Fosfatasa alcalina (FA): Indicadora de colestasis.
GGT (gamma-glutamil transferasa): Asociada a consumo de alcohol y patologías biliares.
Amilasa: Aumentada en pancreatitis aguda y patologías salivales. Lipasa: Específica de pancreatitis.
CK-MB: Indicadora de infarto agudo de miocardio. Troponinas con actividad enzimática.
Fosfatasa ácida: Elevada en patologías prostáticas.
Estudios Especiales:
f) Enzimas Hepáticas y Pancreáticas
Hepáticas:
ALT: Predomina en el hígado, elevada en hepatitis, indicador sensible hep.
AST: Menos específica, también presente en músculo y corazón.
ALP/ FA: Elevada en obstrucción biliar o enfermedades óseas.
GGT: Sensible a colestasis e ingesta alcohólica. Confirma el diagnóstico hepático de la FA.
Elevaciones en ALT/AST: Hepatitis vírica, tóxica o alcohólica.
Elevación aislada de GGT: Alcoholismo crónico.
Pancreaticas:
Amilasa: Marcador temprano de pancreatitis aguda. Lipasa: Específica del páncreas, más sensible y duradera que la amilasa.